Применение магнитного поля в регенерации костной ткани: современное состояние вопроса и перспективы развития метода
- Авторы: Мураев А.А.1, Манукян Г.Г.1, Салех К.М.1, Бонарцев А.П.2, Волков А.В.1
-
Учреждения:
- Российский университет дружбы народов
- Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
- Выпуск: Том 28, № 1 (2024): СТОМАТОЛОГИЯ
- Страницы: 9-22
- Раздел: Стоматология
- URL: https://journals.rudn.ru/medicine/article/view/38293
- DOI: https://doi.org/10.22363/2313-0245-2024-28-1-9-22
- EDN: https://elibrary.ru/TMYOTY
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Актуальность . Магниты с давних времен использовались для лечения различных заболеваний, особенно при воспалительных процессах. Согласно существующим историческим данным, магнитотерапию применяли уже в древности китайцы, египтяне и греки. Разная сила магнитного поля по-разному влияет на клетки, при этом наиболее широко используются магнитные поля средней силы. В настоящем обзоре литературы представлены краткая история и современное состояние вопроса применения магнитного поля в регенерации костной ткани. Уточнены современные знания о механизмах физиологической и репаративной регенерации, восстановления костной ткани, а также рассмотрены современные направления инженерии костной ткани с учетом особенностей микроциркуляции и влияние магнитного поля на физиологию костной ткани и репаративную регенерацию. Одним из ключевых выводов обзора является то, что магнитное поле улучшает восстановление костной ткани, влияя на метаболическое поведение клеток. Исследования показывают, что магнитотерапия способствует активации клеточных процессов, ускоряет образование новой костной ткани и повышает ее качество. Также отмечается, что магнитное поле оказывает положительное влияние на микроциркуляцию, улучшая кровоснабжение тканей и способствуя лучшему поступлению питательных веществ к месту повреждения. Это способствует более быстрому заживлению ран и ранней реабилитации пациентов. Выводы. Магнитотерапия является одним из эффективных физических и реабилитационных методов лечения, которые будут приобретать все большее значение в современной медицине. Однако необходимо проводить дальнейшие исследования для более полного понимания механизмов действия магнитного поля на костную ткань и определения оптимальных параметров его применения.
Ключевые слова
Об авторах
А. А. Мураев
Российский университет дружбы народов
Email: ms.s.karina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-3982-5512
Москва, Российская Федерация
Г. Г. Манукян
Российский университет дружбы народов
Email: ms.s.karina@mail.ru
ORCID iD: 0009-0007-8636-994X
Москва, Российская Федерация
К. М. Салех
Российский университет дружбы народов
Email: ms.s.karina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4415-766X
Москва, Российская Федерация
А. П. Бонарцев
Московский государственный университет имени М.В. Ломоносова
Email: ms.s.karina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5894-9524
Москва, Российская Федерация
А. В. Волков
Российский университет дружбы народов
Автор, ответственный за переписку.
Email: ms.s.karina@mail.ru
ORCID iD: 0000-0002-5611-3990
Москва, Российская Федерация
Список литературы
- Gilbert W. De Magnete. Dover Publication Inc.: New York, NY, USA, 1958.
- Von Middendorff AT. Die Isepiptesen Russlands. Kaiserlichen Akademie der Wissenschaften: St. Petersburg, Russia, 1855.
- Schott H. Zur Geschichte der Elektrotherapie und ihrer Beziehung zum Heilmagnetismus. In Naturheilverfahren und Unkonventionelle Medizinische Richtunge. Springer: Berlin/Heidelberg, Germany, 1996.
- Талантов П.В. Доказательная медицина от магии до поисков бессмертия. М.: Издательство АСТ: CORPUS, 2019. 560 с.
- Pajarinen J, Lin T, Gibon E, Kohno Y, Maruyama M, Nathan K, Lu L, Yao Z, Goodman SB. Mesenchymal stem cell-macrophage crosstalk and bone healing. Biomaterials. 2019;196:80-89. doi: 10.1016/j.biomaterials.2017.12.025
- Diomede F, Marconi GD, Fonticoli L, Pizzicanella J, Merciaro I, Bramanti P, Mazzon E, Trubiani O. Functional Relationship between Osteogenesis and Angiogenesis in Tissue Regeneration. Int J Mol Sci. 2020;21(9):3242. doi: 10.3390/ijms21093242
- Massari L, Benazzo F, Falez F, Perugia D, Pietrogrande L, Setti S, Osti R, Vaienti E, Ruosi C, Cadossi R. Biophysical stimulation of bone and cartilage: state of the art and future perspectives. Int Orthop. 2019;43(3):539-551. doi: 10.1007/s00264-018-4274-3
- Majidinia M, Sadeghpour A, Yousefi B. The roles of signaling pathways in bone repair and regeneration. J Cell Physiol. 2018;233(4):2937-2948. doi: 10.1002/jcp.26042
- Shang F, Yu Y, Liu S, Ming L, Zhang Y, Zhou Z, Zhao J, Jin Y. Advancing application of mesenchymal stem cell-based bone tissue regeneration. Bioact Mater. 2020;6(3):666-683. doi: 10.1016/j.bioactmat.2020.08.014
- Zhang S, Li X, Qi Y, Ma X, Qiao S, Cai H, Zhao BC, Jiang HB, Lee ES. Comparison of Autogenous Tooth Materials and Other Bone Grafts. Tissue Eng Regen Med. 2021;18(3):327-341. doi: 10.1007/s13770-021-00333-4
- Мураев А.А., Иванов С.Ю., Ивашкевич С.Г., Горшенев В.Н., Телешев А.Т., Кибардин А.В., Кобец К.К., Дубровин В.К. Органотипичные костные трансплантаты - перспектива развития современных остеопластических материалов // Стоматология. 2017. Т. 96. № . 3. С. 36-37.
- Chocholata P, Kulda V, Babuska V. Fabrication of Scaffolds for Bone-Tissue Regeneration. Materials (Basel). 2019;12(4):568. doi: 10.3390/ma12040568
- Battafarano G, Rossi M, De Martino V, Marampon F, Borro L, Secinaro A, Del Fattore A. Strategies for Bone Regeneration: From Graft to Tissue Engineering. Int J Mol Sci. 2021;22(3):1128. doi: 10.3390/ijms22031128
- Liang B, Liang JM, Ding JN, Xu J, Xu JG, Chai YM. Dimethyloxaloylglycine-stimulated human bone marrow mesenchymal stem cell-derived exosomes enhance bone regeneration through angiogenesis by targeting the AKT/mTOR pathway. Stem Cell Res Ther. 2019;10(1):335. doi: 10.1186/s13287-019-1410-y
- Naudot M, Garcia A, Jankovsky N, Barre A, Zabijak L, Azdad SZ, Collet L, Bedoui F, Hébraud A, Schlatter G, Devauchelle B, Marolleau JP, Legallais C, Le Ricousse S. The combination of a poly-caprolactone/nano-hydroxyapatite honeycomb scaffold and mesenchymal stem cells promotes bone regeneration in rat calvarial defects. J Tissue Eng Regen Med. 2020;14(11):1570-1580. doi: 10.1002/term.3114
- Wubneh A, Tsekoura EK, Ayranci C, Uludag H. Current state of fabrication technologies and materials for bone tissue engineering. Acta Biomater. 2018;80:1-30. doi: 10.1016/j.actbio.2018.09.031
- Iaquinta MR, Mazzoni E, Bononi I, Rotondo J, Mazziotta C, Montesi M, Sprio S, Tampieri A, Tognon, Martini F. Adult Stem Cells for Bone Regeneration and Repair. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 2019;7:268. doi: 10.3389/fcell.2019.00268
- Huang X, Das R, Patel A, Nguyen TD. Physical Stimulations for Bone and Cartilage Regeneration. Regen Eng Transl Med. 2018;4(4):216-237. doi: 10.1007/s40883-018-0064-0
- Li S, Wei C, Lv Y. Preparation and Application of Magnetic Responsive Materials in Bone Tissue Engineering. Curr Stem Cell Res Ther. 2020;15(5):428-440. doi: 10.2174/1574888X15666200101122505
- Zhu F, Liu W, Li P, Zhao H, Deng X, Wang HL. Electric/Magnetic Intervention for Bone Regeneration: A Systematic Review and Network Meta-Analysis. Tissue Eng Part B Rev. 2023;29(3):217-231. doi: 10.1089/ten.TEB.2022.0127
- Бинги В.Н. Принципы электромагнитной биофизики. // М.: ФИЗМАТЛИТ. 2011. 592 стр.
- Миллер М.А., Суворов Е.В. Лоренца сила // М.: «Советская энциклопедия». 1988. 704 стр.
- Булыгин В.С. Сила Лоренца. М.: Большая российская энциклопедия, 2004-2017.
- Улащик В.С. Физиотерапия. Новейшие методы и технологии: Справочное пособие. М.: Книжный дом. 2013. 448 с.
- Максимов A.B., Шиман А.Г. Лечебное применение магнитных полей: Учебное пособие. Л., 1991. 49 стр.
- Binhi VN, Rubin AB. Theoretical Concepts in Magnetobiology after 40 Years of Research. Cells. 2022;11(2):274. doi: 10.3390/cells11020274
- Ning C, Zhou Z, Tan G, Zhu Y, Mao C. Electroactive polymers for tissue regeneration: Developments and perspectives. Prog. Polym. Sci. 2018;81:144-162. doi: 10.1016/j.progpolymsci.2018.01.001
- Ribeiro C, Sencadas V, Correia DM, Lanceros-Méndez S. Piezoelectric polymers as biomaterials for tissue engineering applications. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. 2015;136:46-55. doi: 10.1016/j.colsurfb.2015.08.043
- Halperin C, Mutchnik S, Agronin A, Molotskii M, Urenski P, Salai M, Rosenman G. Piezoelectric effect in human bones studied in nanometer scale. Nano Letters. 2004;4(7):1253-1256, doi: 10.1021/nl049453i
- Fukada E, Yasuda I. On the Piezoelectric Effect of Bone. J. Phys. Soc. Jpn. 1957;12:1158-1162. doi: 10.1143/JPSJ.12.1158
- Zhou T, Gao B, Fan Y, Liu Y, Feng S, Cong Q, Zhang X, Zhou Y, Yadav PS, Lin J, Wu N, Zhao L, Huang D, Zhou S, Su P, Yang Y. Piezo1/2 mediate mechanotransduction essential for bone formation through concerted activation of NFAT-YAP1-ß-catenin. Elife. 2020;9: e52779. doi: 10.7554/eLife.52779
- Wolfenson H, Yang B, Sheetz MP. Steps in Mechanotransduction Pathways that Control Cell Morphology. Annu Rev Physiol. 2019;81:585-605. doi: 10.1146/annurev-physiol-021317-121245
- Qin L, Liu W, Cao H, Xiao G. Molecular mechanosensors in osteocytes. Bone Res. 2020;8:23. doi: 10.1038/s41413-020-0099-y
- Xu X, Liu S, Liu H, Ru K, Jia Y, Wu Z, Liang S, Khan Z, Chen Z, Qian A, Hu L. Piezo Channels: Awesome Mechanosensitive Structures in Cellular Mechanotransduction and Their Role in Bone. Int J Mol Sci. 2021;22(12):6429. doi: 10.3390/ijms22126429
- Qi Y, Zhang S, Zhang M, Zhou Z, Zhang X, Li W, Cai H, Zhao BC, Lee ES, Jiang HB. Effects of Physical Stimulation in the Field of Oral Health. Scanning. 2021;2021:5517567. doi: 10.1155/2021/5517567
- Jing D, Zhai M, Tong S, Xu F, Cai J, Shen G, Wu Y, Li X, Xie K, Liu J, Xu Q, Luo E. Pulsed electromagnetic fields promote osteogenesis and osseointegration of porous titanium implants in bone defect repair through a Wnt/β-catenin signaling-associated mechanism. Sci Rep. 2016;6:32045. doi: 10.1038/srep32045
- Umiatin U, Hadisoebroto Dilogo I, Sari P, Kusuma Wijaya S. Histological Analysis of Bone Callus in Delayed Union Model Fracture Healing Stimulated with Pulsed Electromagnetic Fields (PEMF). Scientifica (Cairo). 2021;2021:4791172. doi: 10.1155/2021/4791172
- Yuan J, Xin F, Jiang W. Underlying Signaling Pathways and Therapeutic Applications of Pulsed Electromagnetic Fields in Bone Repair. Cell Physiol Biochem. 2018;46(4):1581-1594. doi: 10.1159/000489206
- Mansourian M, Shanei A. Evaluation of Pulsed Electromagnetic Field Effects: A Systematic Review and Meta-Analysis on Highlights of Two Decades of Research In Vitro Studies. Biomed Res Int. 2021;2021:6647497. doi: 10.1155/2021/6647497
- Zhai M, Jing D, Tong S, Wu Y, Wang P, Zeng Z, Shen G, Wang X, Xu Q, Luo E. Pulsed electromagnetic fields promote in vitro osteoblastogenesis through a Wnt/β-catenin signaling-associated mechanism. Bioelectromagnetics. 2016;37(3):152-162. doi: 10.1002/bem.21961
- Okada R, Yamato K, Kawakami M, Kodama J, Kushioka J, Tateiwa D, Ukon Y, Zeynep B, Ishimoto T, Nakano T, Yoshikawa H, Kaito T. Low magnetic field promotes recombinant human BMP-2-induced bone formation and influences orientation of trabeculae and bone marrow-derived stromal cells. Bone Rep. 2021;14:100757. doi: 10.1016/j.bonr.2021.100757
- Kamei N, Adachi N, Ochi M. Magnetic cell delivery for the regeneration of musculoskeletal and neural tissues. Regen Ther. 2018;9:116-119. doi: 10.1016/j.reth.2018.10.001
- Peng L, Fu C, Xiong F, Zhang Q, Liang Z, Chen L, He C, Wei Q. Effectiveness of Pulsed Electromagnetic Fields on Bone Healing: A Systematic Review and Meta-Analysis of Randomized Controlled Trials. Bioelectromagnetics. 2020;41(5):323-337. doi: 10.1002/bem.22271
- Zhao H, Liu C, Liu Y, Ding Q, Wang T, Li H, Wu H, Ma T. Harnessing electromagnetic fields to assist bone tissue engineering. Stem Cell Res Ther. 2023;14(1):7. doi: 10.1186/s13287-022-03217-z
- Di Bartolomeo M, Cavani F, Pellacani A, Grande A, Salvatori R, Chiarini L, Nocini R, Anesi A. Pulsed Electro-Magnetic Field (PEMF) Effect on Bone Healing in Animal Models: A Review of Its Efficacy Related to Different Type of Damage. Biology (Basel). 2022;11(3):402. doi: 10.3390/biology11030402
- Yang J, Zhou S, Lv H, Wei M, Fang Y, Shang P. Static magnetic field of 0.2-0.4 T promotes the recovery of hindlimb unloading-induced bone loss in mice. Int J Radiat Biol. 2021;97(5):746-754. doi: 10.1080/09553002.2021.1900944
- Naito Y, Yamada S, Jinno Y, Arai K, Galli S, Ichikawa T, Jimbo R. Bone-Forming Effect of a Static Magnetic Field in Rabbit Femurs. Int J Periodontics Restorative Dent. 2019;39(2):259-264. doi: 10.11607/prd.3220
- Zhang J, Ding C, Ren L, Zhou Y, Shang P. The effects of static magnetic fields on bone. Prog Biophys Mol Biol. 2014;114(3):146-52. doi: 10.1016/j.pbiomolbio.2014.02.001
- Zhang J, Meng X, Ding C, Shang P. Effects of static magnetic fields on bone microstructure and mechanical properties in mice. Electromagn Biol Med. 2018;37(2):76-83. doi: 10.1080/15368378.2018.1458626
- Zhang XY, Xue Y, Zhang Y. Effects of 0.4 T rotating magnetic field exposure on density, strength, calcium and metabolism of rat thigh bones. Bioelectromagnetics. 2006;27(1):1-9. doi: 10.1002/bem.20165
- Pan X, Xiao D, Zhang X, Huang Y, Lin B. Study of rotating permanent magnetic field to treat steroid-induced osteonecrosis of femoral head. Int Orthop. 2009;33(3):617-23. doi: 10.1007/s00264-007-0506-7
- Du L, Fan H, Miao H, Zhao G, Hou Y. Extremely low frequency magnetic fields inhibit adipogenesis of human mesenchymal stem cells. Bioelectromagnetics. 2014;35(7):519-30. doi: 10.1002/bem.21873
- Jing D, Cai J, Wu Y, Shen G, Zhai M, Tong S, Xu Q, Xie K, Wu X, Tang C, Xu X, Liu J, Guo W, Jiang M, Luo E. Moderate-intensity rotating magnetic fields do not affect bone quality and bone remodeling in hindlimb suspended rats. PLoS One. 2014;9(7): e102956. doi: 10.1371/journal.pone.0102956.
- Lee EJ, Jain M, Alimperti S. Bone Microvasculature: Stimulus for Tissue Function and Regeneration. Tissue Eng Part B Rev. 2021;27(4):313-329. doi: 10.1089/ten.TEB.2020.0154
- Lopes D, Martins-Cruz C, Oliveira MB, Mano JF. Bone physiology as inspiration for tissue regenerative therapies. Biomaterials. 2018;185:240-275. doi: 10.1016/j.biomaterials.2018.09.028
- Wiszniak S, Schwarz Q. Exploring the Intracrine Functions of VEGF-A. Biomolecules. 2021;11(1):128. doi: 10.3390/biom11010128
- Li Y, Baccouche B, Olayinka O, Serikbaeva A, Kazlauskas A. The Role of the Wnt Pathway in VEGF/Anti-VEGF-Dependent Control of the Endothelial Cell Barrier. Invest Ophthalmol Vis Sci. 2021;62(12):17. doi: 10.1167/iovs.62.12.17
- Caliogna L, Medetti M, Bina V, Brancato AM, Castelli A, Jannelli E, Ivone A, Gastaldi G, Annunziata S, Mosconi M, Pasta G. Pulsed Electromagnetic Fields in Bone Healing: Molecular Pathways and Clinical Applications. Int J Mol Sci. 2021;22(14):7403. doi: 10.3390/ijms22147403
- Hyldahl F, Hem-Jensen E, Rahbek UL, Tritsaris K, Dissing S. Pulsed electric fields stimulate microglial transmitter release of VEGF, IL-8 and GLP-1 and activate endothelial cells through paracrine signaling. Neurochem Int. 2023;163:105469. doi: 10.1016/j.neuint.2022.105469
- Peng L, Fu C, Liang Z, Zhang Q, Xiong F, Chen L, He C, Wei Q. Pulsed Electromagnetic Fields Increase Angiogenesis and Improve Cardiac Function After Myocardial Ischemia in Mice. Circ J. 2020;84(2):186-193. doi: 10.1253/circj.CJ-19-0758
- Cardoso VF, Francesko A, Ribeiro C, Bañobre-López M, Martins P, Lanceros-Mendez S. Advances in Magnetic Nanoparticles for Biomedical Applications. Adv Healthc Mater. 2018;7(5). doi: 10.1002/adhm.201700845
- Farzin A, Etesami SA, Quint J, Memic A, Tamayol A. Magnetic Nanoparticles in Cancer Therapy and Diagnosis. Adv Healthc Mater. 2020;9(9): e1901058. doi: 10.1002/adhm.201901058
- Shubayev VI, Pisanic TR, Jin S. Magnetic nanoparticles for theragnostics. Adv Drug Deliv Rev. 2009;61(6):467-467. doi: 10.1016/j.addr.2009.03.007
- Шустов М.А., Шустова В.А. Физиотерапия в стоматологии и челюстно-лицевой хирургии. C.: СпецЛит, 2019. 167 с.
- Бычков А.И. Электромагнитостимуляция процессов регенерации при дентальной имплантации: дисс. мед. наук. М., 2005. 186 с.
- Дагаев Н.Д. Свойства магнитных наночастиц оксида железа и области их применения // Наука и образование: актуальные вопросы теории и практики: материалы Международной научно-методической конференции, Оренбург, 2021. С. 223-225.
- Куклина А.С. Наночастицы магнетита: методы получения и свойства (литературный обзор) // Modern science. 2019. T. 6. № 2. С. 8-12.
- Aghajanian AH, Bigham A, Sanati A, Kefayat A, Salamat MR, Sattary M, Rafienia M. A 3D macroporous and magnetic Mg2SiO4-CuFe2O4 scaffold for bone tissue regeneration: Surface modification, in vitro and in vivo studies. Biomater Adv. 2022;1(37):212809. doi: 10.1016/j.bioadv.2022.212809
- Wu D, Chang X, Tian J, Kang L, Wu Y, Liu J, Wu X, Huang Y, Gao B, Wang H, Qiu G, Wu Z. Bone mesenchymal stem cells stimulation by magnetic nanoparticles and a static magnetic field: release of exosomal miR-1260a improves osteogenesis and angiogenesis. J Nanobiotechnology. 2021;19(1):209. doi: 10.1186/s12951-021-00958-6
- Xia Y, Chen H, Zhao Y, Zhang F, Li X, Wang L, Weir MD, Ma J, Reynolds MA, Gu N, Xu HHK. Novel magnetic calcium phosphate-stem cell construct with magnetic field enhances osteogenic differentiation and bone tissue engineering. Mater Sci Eng C Mater Biol Appl. 2019;98:30-41. doi: 10.1016/j.msec.2018.12.120
- Замай Т.Н., Толмачева Т.В. Новые стратегии регенерации костной ткани с помощью магнитомеханической трансдукции // Сибирское медицинское обозрение. 2021. № . 6. С. 5-11.
- Lu JW, Yang F, Ke QF, Xie XT, Guo YP. Magnetic nanoparticles modified-porous scaffolds for bone regeneration and photothermal therapy against tumors. Nanomedicine. 2018;14(3):811-822. doi: 10.1016/j.nano.2017.12.025
- Qing L, Gang Z, Tong W, Yongzhao H, Xuliang D, Yan Wei. Investigations into the Biocompatibility of Nano-hydroxyapatite Coated Magnetic Nanoparticles under Magnetic Situation. Journal of Nanomaterials. 2015;10. http://dx.doi.org/10.1155/2015/835604
- Galli C, Pedrazzi G, Mattioli-Belmonte M, Guizzardi S. The Use of Pulsed Electromagnetic Fields to Promote Bone Responses to Biomaterials In Vitro and In Vivo. Int J Biomater. 2018;2018:8935750. doi: 10.1155/2018/8935750