Модульная организация мозгового вещества надпочечника крысы

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Актуальность. В настоящее время представление о тканевых морфофункциональных единицах (модулях) мозгового вещества надпочечников не полностью сформировано для клеток, запасающих адреналин (А-), и совершенно не разработано для клеток, запасающих норадреналин (НА-). Цель. Отдельно для A- и НA-клеток установить модули в мозговом веществе надпочечников на основе критериев, разработанных фундаментальной гистологией. Материалы и методы. В исследовании использовали серийные, полутонкие и ультратонкие срезы надпочечников толщиной 7-9 мкм 6 взрослых крыс-самцов линии Вистар (масса 335 ± 25 г). Срезы окрашивали по методу Оноре с дополнительным окрашиванием толуидиновым синим, позволяющим достоверно различать А- и НА-клетки в мозговом веществе. А-клетки окрашены в синий цвет, а НА-клетки - в зеленый. Использовали световую и электронную микроскопию для визуализации серийных, полутонких и ультратонких срезов надпочечников взрослых самцов крыс с дифференцировкой А- и НА-клеток. Результаты обсуждение. А-клетки образовывали округлые скопления, в которых располагались в один слой на базальной мембране. Их боковые стороны плотно прилегали друг к другу, а внутренние стороны (центральная часть комплексов) образовывали межклеточные расширения, микровыпячивания и первичные реснички. Менее плотно расположенные НA-клетки образовывали многогранные балки. Оба типа клеточных комплексов были связаны с дополнительными компонентами (стромальными, нервными, сосудистым и др.). Центральные расширения округлых скоплений А-клеток, по-видимому, служат для удержания части уже образованного адреналина, что повышает готовность мозгового вещества к быстрому высвобождению больших количеств адреналина в случае сверхострого стресса. Соответственно, приверженность скоплений А-клеток к округлой форме определяется необходимостью создания таких центральных изолированных накопительных расширений. НA-клетки располагаются более свободно и не образуют изолированных межклеточных расширений, что позволяет НA-клеткам вклиниваться между стабильно круглыми скоплениями A-клеток, в результате чего формируются их многогранные балки. Выводы. Установлено, что мозговое вещество надпочечников крыс содержит два логически и морфофункционально различных типа специфических модулей. А-модуль представляет собой округлое скопление А-клеток, а НA-модуль - многогранная балка из НA-клеток, оба связаны со вспомогательными компонентами.

Об авторах

К. Г. Кемоклидзе

Ярославский государственный медицинский университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: K_G_K@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4907-7757
г. Ярославль, Российская Федерация

Н. А. Тюмина

Ярославский государственный медицинский университет

Email: K_G_K@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-7001-0851
г. Ярославль, Российская Федерация

Список литературы

  1. Клочков Н.Д. Гистион как элементарная морфофункциональная единица // Морфология. 1997. Т. 112, вып. 5. С. 87-88
  2. Данилов P.К. Общие принципы клеточной организации, развития и классификации тканей // Руководство по гистологии / Под ред. Р.К. Данилова. 2-е изд., испр. и доп. СПб.: СпецЛит, 2010. Т. 1. С. 98-123
  3. Кемоклидзе К.Г. Морфофункциональные единицы органа: история и современное состояние вопроса // Морфология. 2019. Т. 156. № 5. С. 93-97
  4. Tomlinson A, Durbin J, Coupland RE. A quantitative analysis of rat adrenal chromaffin tissue: morphometric analysis at tissue and cellular level correlated with catecholamine content. Neuroscience. 1987;20(3):895-904. doi: 10.1016/0306-4522(87)90250-8
  5. Павлов А.В., Кемоклидзе К.Г. Цитологические механизмы постнатального роста хромаффинной ткани надпочечника // Онтогенез. 1998. Т. 29. N. 2. С. 123-128
  6. Coupland RE, Kobayashi S, Tomlinson A. On the presence of small granule chromaffin cells (SGC) in the rodent adrenal medulla. Journal of Anatomy. 1977;124(2):488-489.
  7. Kobayashi S. Adrenal medulla: chromaffin cells as paraneurons. Archivum histologicum japonicum. 1977;40 Suppl:61-79. doi: 10.1679/aohc1950.40.supplement_61
  8. Tischler AS, DeLellis RA. The Rat Adrenal Medulla. I. The Normal Adrenal. Journal of the American College of Toxicology. 1988;7(1):1-21. doi: 10.3109/10915818809078700
  9. Coupland RE. The natural history of the chromaffin cell - twenty-five years on the beginning. Archives of Histology and Cytology. 1989;52(Suppl):331-341. doi: 10.1679/aohc.52.suppl_331
  10. Coupland RE, Tomlinson A. The development and maturation of adrenal medullary chromaffin cells of the rat in vivo: A descriptive and quantitative study. International Journal of Developmental Neuroscience. 1989;7(5):419-438. doi: 10.1016/0736-5748(89)90003-8
  11. Hillarp NA. Functional organization of the peripheral autonomic innervation. Acta Anatomica. 1946-47;2(4):103-130. doi: 10.1159/000140657
  12. Iijima T, Matsumoto G, Kidokoro Y. Synaptic activation of rat adrenal medulla examined with a large photodiode array in combination with a voltage-sensitive dye. Neuroscience. 1992;51(1):211-219. doi: 10.1016/0306-4522(92)90486-l
  13. Kajiwara R, Sand O, Kidokoro Y, Barish ME, Iijima T. Functional organization of chromaffin cells and cholinergic synaptic transmission in rat adrenal medulla. Japanese Journal of Physiology. 1997;47(5):449-464. doi: 10.2170/jjphysiol.47.449
  14. Martin AO, Mathieu M-N, Chevillard C, Guérineau NC. Gap junctions mediate electrical signaling and ensuing cytosolic Ca2+ increases between chromaffin cells in adrenal slices: A role in catecholamine release. The Journal of Neuroscience. 2001;21(15):5397-5405. doi: 10.1523/JNEUROSCI.21-15-05397.2001
  15. Honoré, LH. A light microscopic method for the differentiation of noradrenaline and adrenaline producing cells of the rat adrenal medulla. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 1971;19(8): 483-486. doi: 10.1177/19.8.483
  16. Kemoklidze KG, Tyumina NA, Leonenko PS. 3D reconstruction of the rat adrenal medulla. Anatomia, Histologia, Embryologia. 2021;50(5):781-787. doi: 10.1111/ahe.12720
  17. Coupland RE. Electron microscopic observations on the structure of the rat adrenal medulla I. The ultrastructure and organization of chromaffin cells in the normal adrenal medulla. Journal of Anatomy. 1965;99(2):231-254.
  18. Coupland RE. Ultrastructural features of the mammalian adrenal medulla. In: Motta P, editor. Ultrastructure of Endocrine Cells and Tissues; 1984. Ch. 15. P. 168-179.
  19. Kikuta A, Ohtani O, Murakami T. Three-dimensional organization of the collagen fibrillar framework in the rat adrenal gland. Archives of Histology and Cytology. 1991;54(2):133-144. doi: 10.1679/aohc.54.133
  20. Kikuta A, Murakami T. Microcirculation of the rat adrenal gland: A scanning electron microscope study of vascular casts. American Journal of Anatomy. 1982;164(1): 19-28. doi: 10.1002/aja.1001640103
  21. Kikuta A, Murakami T. Relationship between chromaffin cells and blood vessels in the rat adrenal medulla: A transmission electron microscopic study combined with blood vessel reconstructions. American Journal of Anatomy. 1984; 170(1):73-81. doi: 10.1002/aja.1001700106
  22. Murakami T, Oukouchi H, Uno Y, Ohtsuka A, Taguchi T. Blood vascular beds of rat adrenal and accessory adrenal glands, with special reference to the corticomedullary portal system: A further scanning electron microscopic study of corrosion casts and tissue specimens. Archives of Histology and Cytology. 1989;52(2):461-476. doi: 10.1679/aohc.52.461
  23. Coupland RE, Selby JE. The blood supply of the mammalian adrenal medulla: A comparative study. Journal of Anatomy. 1976;122(3):539-551.
  24. Nemes Z. The cytoarchitecture of the adrenal medulla in the rat. Acta morphologica Academiae Scientiarum Hungaricae. 1976;24(1-2):47-61.
  25. Lingle CJ, Martinez-Espinosa PL, Guarina L, Carbone E. Roles of Na +, Ca 2+, and K + channels in the generation of repetitive firing and rhythmic bursting in adrenal chromaffin cells. Pflügers Archiv. 2018;470(1):39-52. doi: 10.1007/s00424-017-2048-1
  26. Coupland RE. Electron microscopic observation on the structure of the rat adrenal medulla. II. Normal innervation. Journal of Anatomy. 1965;99(2):255-272.
  27. Tomlinson A, Coupland RE. The innervation of the adrenal gland IV. Innervation of the rat adrenal medulla from birth to old age. A descriptive and quantitative morphometric and biochemical study of the innervation of chromaffin cells and adrenal medullary neurons in Wistar rats. Journal of Anatomy. 1990;169:209-236.
  28. Nordmann JJ. Combined stereological and biochemical analysis of storage and release of catecholamines in the adrenal medulla of the rat. Journal of Neurochemistry. 1984;42(2): 434-437. doi: 10.1111/j.1471-4159.1984.tb02696.x
  29. Vollmer RR, Baruchin A, Kolibal-Pegher SS, Corey SP, Stricker EM, Kaplan BB. Selective activation of norepinephrine- and epinephrine-secreting chromaffin cells in rat adrenal medulla. American Journal of Physiology. 1992;263(3): R 716-R 721. doi: 10.1152/ajpregu.1992.263.3.R 716
  30. Vollmer RR, Balcita JJ, Sved AF, Edwards DJ. Adrenal epinephrine and norepinephrine release to hypoglycemia measured by microdialysis in conscious rats. American Journal of Physiology. 1997;273(3): R 1758-R 1763. doi: 10.1152/ajpregu.1997.273.5.R 1758

© Кемоклидзе К.Г., Тюмина Н.А., 2022

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах