Модульная организация мозгового вещества надпочечника крысы
- Авторы: Кемоклидзе К.Г.1, Тюмина Н.А.1
-
Учреждения:
- Ярославский государственный медицинский университет
- Выпуск: Том 26, № 3 (2022): ФИЗИОЛОГИЯ СТРЕССОРНЫХ ВОЗДЕЙСТВИЙ
- Страницы: 259-273
- Раздел: ФИЗИОЛОГИЯ СТРЕССОРНЫХ ВОЗДЕЙСТВИЙ
- URL: https://journals.rudn.ru/medicine/article/view/32229
- DOI: https://doi.org/10.22363/2313-0245-2022-26-3-259-273
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Актуальность. В настоящее время представление о тканевых морфофункциональных единицах (модулях) мозгового вещества надпочечников не полностью сформировано для клеток, запасающих адреналин (А-), и совершенно не разработано для клеток, запасающих норадреналин (НА-). Цель. Отдельно для A- и НA-клеток установить модули в мозговом веществе надпочечников на основе критериев, разработанных фундаментальной гистологией. Материалы и методы. В исследовании использовали серийные, полутонкие и ультратонкие срезы надпочечников толщиной 7-9 мкм 6 взрослых крыс-самцов линии Вистар (масса 335 ± 25 г). Срезы окрашивали по методу Оноре с дополнительным окрашиванием толуидиновым синим, позволяющим достоверно различать А- и НА-клетки в мозговом веществе. А-клетки окрашены в синий цвет, а НА-клетки - в зеленый. Использовали световую и электронную микроскопию для визуализации серийных, полутонких и ультратонких срезов надпочечников взрослых самцов крыс с дифференцировкой А- и НА-клеток. Результаты обсуждение. А-клетки образовывали округлые скопления, в которых располагались в один слой на базальной мембране. Их боковые стороны плотно прилегали друг к другу, а внутренние стороны (центральная часть комплексов) образовывали межклеточные расширения, микровыпячивания и первичные реснички. Менее плотно расположенные НA-клетки образовывали многогранные балки. Оба типа клеточных комплексов были связаны с дополнительными компонентами (стромальными, нервными, сосудистым и др.). Центральные расширения округлых скоплений А-клеток, по-видимому, служат для удержания части уже образованного адреналина, что повышает готовность мозгового вещества к быстрому высвобождению больших количеств адреналина в случае сверхострого стресса. Соответственно, приверженность скоплений А-клеток к округлой форме определяется необходимостью создания таких центральных изолированных накопительных расширений. НA-клетки располагаются более свободно и не образуют изолированных межклеточных расширений, что позволяет НA-клеткам вклиниваться между стабильно круглыми скоплениями A-клеток, в результате чего формируются их многогранные балки. Выводы. Установлено, что мозговое вещество надпочечников крыс содержит два логически и морфофункционально различных типа специфических модулей. А-модуль представляет собой округлое скопление А-клеток, а НA-модуль - многогранная балка из НA-клеток, оба связаны со вспомогательными компонентами.
Об авторах
К. Г. Кемоклидзе
Ярославский государственный медицинский университет
Автор, ответственный за переписку.
Email: K_G_K@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-4907-7757
г. Ярославль, Российская Федерация
Н. А. Тюмина
Ярославский государственный медицинский университет
Email: K_G_K@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-7001-0851
г. Ярославль, Российская Федерация
Список литературы
- Клочков Н.Д. Гистион как элементарная морфофункциональная единица // Морфология. 1997. Т. 112, вып. 5. С. 87-88
- Данилов P.К. Общие принципы клеточной организации, развития и классификации тканей // Руководство по гистологии / Под ред. Р.К. Данилова. 2-е изд., испр. и доп. СПб.: СпецЛит, 2010. Т. 1. С. 98-123
- Кемоклидзе К.Г. Морфофункциональные единицы органа: история и современное состояние вопроса // Морфология. 2019. Т. 156. № 5. С. 93-97
- Tomlinson A, Durbin J, Coupland RE. A quantitative analysis of rat adrenal chromaffin tissue: morphometric analysis at tissue and cellular level correlated with catecholamine content. Neuroscience. 1987;20(3):895-904. doi: 10.1016/0306-4522(87)90250-8
- Павлов А.В., Кемоклидзе К.Г. Цитологические механизмы постнатального роста хромаффинной ткани надпочечника // Онтогенез. 1998. Т. 29. N. 2. С. 123-128
- Coupland RE, Kobayashi S, Tomlinson A. On the presence of small granule chromaffin cells (SGC) in the rodent adrenal medulla. Journal of Anatomy. 1977;124(2):488-489.
- Kobayashi S. Adrenal medulla: chromaffin cells as paraneurons. Archivum histologicum japonicum. 1977;40 Suppl:61-79. doi: 10.1679/aohc1950.40.supplement_61
- Tischler AS, DeLellis RA. The Rat Adrenal Medulla. I. The Normal Adrenal. Journal of the American College of Toxicology. 1988;7(1):1-21. doi: 10.3109/10915818809078700
- Coupland RE. The natural history of the chromaffin cell - twenty-five years on the beginning. Archives of Histology and Cytology. 1989;52(Suppl):331-341. doi: 10.1679/aohc.52.suppl_331
- Coupland RE, Tomlinson A. The development and maturation of adrenal medullary chromaffin cells of the rat in vivo: A descriptive and quantitative study. International Journal of Developmental Neuroscience. 1989;7(5):419-438. doi: 10.1016/0736-5748(89)90003-8
- Hillarp NA. Functional organization of the peripheral autonomic innervation. Acta Anatomica. 1946-47;2(4):103-130. doi: 10.1159/000140657
- Iijima T, Matsumoto G, Kidokoro Y. Synaptic activation of rat adrenal medulla examined with a large photodiode array in combination with a voltage-sensitive dye. Neuroscience. 1992;51(1):211-219. doi: 10.1016/0306-4522(92)90486-l
- Kajiwara R, Sand O, Kidokoro Y, Barish ME, Iijima T. Functional organization of chromaffin cells and cholinergic synaptic transmission in rat adrenal medulla. Japanese Journal of Physiology. 1997;47(5):449-464. doi: 10.2170/jjphysiol.47.449
- Martin AO, Mathieu M-N, Chevillard C, Guérineau NC. Gap junctions mediate electrical signaling and ensuing cytosolic Ca2+ increases between chromaffin cells in adrenal slices: A role in catecholamine release. The Journal of Neuroscience. 2001;21(15):5397-5405. doi: 10.1523/JNEUROSCI.21-15-05397.2001
- Honoré, LH. A light microscopic method for the differentiation of noradrenaline and adrenaline producing cells of the rat adrenal medulla. Journal of Histochemistry and Cytochemistry. 1971;19(8): 483-486. doi: 10.1177/19.8.483
- Kemoklidze KG, Tyumina NA, Leonenko PS. 3D reconstruction of the rat adrenal medulla. Anatomia, Histologia, Embryologia. 2021;50(5):781-787. doi: 10.1111/ahe.12720
- Coupland RE. Electron microscopic observations on the structure of the rat adrenal medulla I. The ultrastructure and organization of chromaffin cells in the normal adrenal medulla. Journal of Anatomy. 1965;99(2):231-254.
- Coupland RE. Ultrastructural features of the mammalian adrenal medulla. In: Motta P, editor. Ultrastructure of Endocrine Cells and Tissues; 1984. Ch. 15. P. 168-179.
- Kikuta A, Ohtani O, Murakami T. Three-dimensional organization of the collagen fibrillar framework in the rat adrenal gland. Archives of Histology and Cytology. 1991;54(2):133-144. doi: 10.1679/aohc.54.133
- Kikuta A, Murakami T. Microcirculation of the rat adrenal gland: A scanning electron microscope study of vascular casts. American Journal of Anatomy. 1982;164(1): 19-28. doi: 10.1002/aja.1001640103
- Kikuta A, Murakami T. Relationship between chromaffin cells and blood vessels in the rat adrenal medulla: A transmission electron microscopic study combined with blood vessel reconstructions. American Journal of Anatomy. 1984; 170(1):73-81. doi: 10.1002/aja.1001700106
- Murakami T, Oukouchi H, Uno Y, Ohtsuka A, Taguchi T. Blood vascular beds of rat adrenal and accessory adrenal glands, with special reference to the corticomedullary portal system: A further scanning electron microscopic study of corrosion casts and tissue specimens. Archives of Histology and Cytology. 1989;52(2):461-476. doi: 10.1679/aohc.52.461
- Coupland RE, Selby JE. The blood supply of the mammalian adrenal medulla: A comparative study. Journal of Anatomy. 1976;122(3):539-551.
- Nemes Z. The cytoarchitecture of the adrenal medulla in the rat. Acta morphologica Academiae Scientiarum Hungaricae. 1976;24(1-2):47-61.
- Lingle CJ, Martinez-Espinosa PL, Guarina L, Carbone E. Roles of Na +, Ca 2+, and K + channels in the generation of repetitive firing and rhythmic bursting in adrenal chromaffin cells. Pflügers Archiv. 2018;470(1):39-52. doi: 10.1007/s00424-017-2048-1
- Coupland RE. Electron microscopic observation on the structure of the rat adrenal medulla. II. Normal innervation. Journal of Anatomy. 1965;99(2):255-272.
- Tomlinson A, Coupland RE. The innervation of the adrenal gland IV. Innervation of the rat adrenal medulla from birth to old age. A descriptive and quantitative morphometric and biochemical study of the innervation of chromaffin cells and adrenal medullary neurons in Wistar rats. Journal of Anatomy. 1990;169:209-236.
- Nordmann JJ. Combined stereological and biochemical analysis of storage and release of catecholamines in the adrenal medulla of the rat. Journal of Neurochemistry. 1984;42(2): 434-437. doi: 10.1111/j.1471-4159.1984.tb02696.x
- Vollmer RR, Baruchin A, Kolibal-Pegher SS, Corey SP, Stricker EM, Kaplan BB. Selective activation of norepinephrine- and epinephrine-secreting chromaffin cells in rat adrenal medulla. American Journal of Physiology. 1992;263(3): R 716-R 721. doi: 10.1152/ajpregu.1992.263.3.R 716
- Vollmer RR, Balcita JJ, Sved AF, Edwards DJ. Adrenal epinephrine and norepinephrine release to hypoglycemia measured by microdialysis in conscious rats. American Journal of Physiology. 1997;273(3): R 1758-R 1763. doi: 10.1152/ajpregu.1997.273.5.R 1758