Микрофлора синовии крупных суставов у пациентов многопрофильного стационара

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Актуальность. Не вызывает сомнения факт участия микроорганизмов в возникновении и развитии септического процесса в суставах. Однако вопрос об этиологической значимости каждого возбудителя остается дискуссионным, поскольку, несмотря на общие тенденции, свидетельствующие об участии многочисленных микроорганизмов в развитии суставной патологии, каждый результат микробиологического анализа касается лишь конкретного в территориальном и клиническом аспекте случая. Цель - проведение микробиологического исследования синовиальной жидкости, полученной при синовите коленного сустава после его аспирации у пациентов различных отделений Ставропольской краевой клинической больницы. Материалы и методы. Исследовались 198 образцов синовиальной жидкости. Проводился первичный посев пунктата с последующими выделением, идентификацией культур методом масс-спектрометрии и оценкой антибиотикочувствительности диско-д иффузионным методом. Результаты и обсуждение . Было выделено 11 культур бактериальных патогенов. Грамположительные кокки - 82 %, из которых 77,8 % - микроорганизмы рода Staphylococcus (44,4 % S.aureus , 33,4 % S.epidermidis ), 22,2 % - прочие грамположительные кокки: по одному штамму Enterococcus faecium и Streptococcus mitis . Грамотрицательные патогены представлены K.pneumoniae и P.aeruginosa с суммарной долей 18 %. Высоковирулентные микроорганизмы S.aureus , K.pneumoniae и P.aeruginosa выделены из синовиальной жидкости пациентов хирургических отделений (ортопедотравматологическое № 1, № 2) и ревматологического отделения. Микроорганизмы с низкой вирулентностью E.faecium , S.mitis и S.epidermidis выделены из синовиальной жидкости пациентов различных отделений. Выраженной резистентности выделенных патогенов к антимикробным препаратам не зарегистрировано. Выводы . Наличие и видовая принадлежность выявленных в синовиальной жидкости микроорганизмов позволяет прогнозировать их этиологическую значимость в развитии септического процесса в суставах. Не исключается их роль как возбудителей нозокомиальных инфекций, характерных для лечебного учреждения. Наличие суставной патологии в каждом из обследованных отделений диктует необходимость четкого понимания значимости проведения своевременной и качественной аспирации сустава с последующим микробиологическим исследованием практически у всех больных с поражением крупных суставов, в том числе у пациентов без клинических признаков септического артрита. Такой подход, позволяющий выявить большее число возбудителей септического артрита и оперативно судить о динамике их антимикробной резистентности, должен стать обязательной частью комплексного обследования и лечения пациента с артритом в многопрофильных стационарах.

Об авторах

И. Н. Щендригин

Ставропольская краевая клиническая больница

Email: rhstav@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-2386-355X
Ставрополь, Российская Федерация

И. А. Подсвирова

Ставропольская краевая клиническая больница

Автор, ответственный за переписку.
Email: rhstav@yandex.ru
ORCID iD: 0000-0002-2567-2212
Ставрополь, Российская Федерация

Список литературы

  1. Теплякова О.В., Руднов В.А., Шлыкова Г.И., Доценко Т.Г. Септический артрит у взрослых // Клин. микробиол. антимикроб. химиотер. 2015. Т. 17. № 3. С. 187-206.
  2. Cipriano A., Santos F.V., Dias R., Carvalho A., Reis E., Pereira C., Santos A.C., Sousa R., Abreu M.A. Adult Native Joint Septic Arthritis: A NineYear Retrospective Analysis in a Portuguese University Hospital // Acta. Med. Port. 2021. V. 34. N 12. P. 826-832. doi: 10.20344/amp.12998
  3. Courtney P., Doherty M. Joint aspiration and injection and synovial fluid analysis // Best Pract Res Clin Rheumatol. 2013. V. 27. N 2. P. 137-169. doi: 10.1016/j.berh.2013.02.005
  4. Bayfield N.G.R., Wang E., Larbalestier R. Medical and conservative surgical management of bacterial sternoclavicular joint septic arthritis: a case series // ANZ Journal of Surgery. 2020. V. 90. N 9. P. 1754-1759. doi: 10.1111/ans.16019
  5. Margaretten M.E., Kohlwes J., Moore D., Bent S. Does this adult patient have septic arthritis? // JAMA. 2007. V. 297 N 13. P. 1478-88. doi: 10.1001/jama.297.13.1478
  6. Duff G.P., Lachiewicz P.F., Kelley S.S. Aspiration of the knee joint before revision arthroplasty // Clin Orthop Relat Res. 1996. N 331. P. 132-139. doi: 10.1097/00003086-199610000-00018
  7. Rasmussen L., Bell J., Kumar A. A Retrospective Review of Native Septic Arthritis in Patients: Can We Diagnose Based on Laboratory Values? // Cureus. 2020. V.12. N 6. e8577. doi: 10.7759/ cureus.8577
  8. Massey P.A., Clark M.D., Walt J.S., Feibel B.M., RobichauxEdwards L.R, Barton R.S. Optimal Synovial Fluid Leukocyte Count Cutoff for Diagnosing Native Joint Septic Arthritis After Antibiotics: A Receiver Operating Characteristic Analysis of Accuracy // Journal of the American Academy of Orthopaedic Surgeons. 2021. V. 29. N 2. P. e1246-e1253. doi: 10.5435/JAAOS-D-20-01152
  9. George J., Chandy V.J., Premnath J., Hariharan T.D., Oommen A.T., Balaji V., Poonnoose P.M. Microbiological profile of septic arthritis in adults: Lessons learnt and treatment strategies // Indian J Med Microbiol. 2019. V. 37. N 1. P. 29-33. doi: 10.4103/ ijmm.IJMM_19_134.
  10. Pavic K., Pandya J., Sebak S., Shetty A., Spencer D., Manolios N. Acute arthritis: predictive factors and current practice in the approach to diagnosis and management across two hospitals in Sydney // Intern Med J. 2018. V. 48. N 9. P. 1087-1095. doi: 10.1111/ imj.13969.
  11. Muñoz-E gea M.-C., Blanco A., FernándezRoblas R., Gadea I., GarcíaCañete J., Sandoval E., Esteban J. Clinical and microbiological characteristics of patients with septic arthritis: A hospitalbased study // Journal of Orthopaedics. 2014. V. 11. N 2. P. 87-90. doi: 10.1016/j.jor.2014.04.002.
  12. OrnelasAguirre J.M. Septic Arthritis in Adults in a Tertiary Care Center // Reumatología Clínica (English Edition). 2016. V. 12. N 1. P. 27-33. doi: 10.1016/j.reumae.2015.11.005.
  13. Vijayvargiya P., Garrigos Z.E., Rodino K.G., Razonable R.R., Abu Saleh, O.M. Clostridium paraputrificum Septic Arthritis and Osteomyelitis of Shoulder: A Case Report and Review of Literature // Anaerobe. 2020. V. 62. P. 102105. doi: 10.1016/j.anaerobe.2019.102105.
  14. Sreckovic S., Kadija M., Ladjevic N., Starcevic B., Stijak L., Milovanovic D., The first case of septic arthritis of the knee caused by Eggerthia catenaformis // Anaerobe. 2022. V. 73. 102503. doi: 10.1016/j.anaerobe.2021.102503.
  15. Costales C., ButlerWu S.M. A Real Pain: Diagnostic Quandaries and Septic Arthritis // Journal of Clinical Microbiology. 2017. V. 56. N 2. doi: 10.1128/jcm.01358-17
  16. Аникин С.Г., Алексеева Л.И. Внутрисуставное и периартикулярное введение кортикостероидных препаратов: методические рекомендации. М.: «МЕД прессинформ», 2013. 31 с.
  17. Самойлова Н.В. Методы локального воздействия при патологии опорно-д вигательного аппарата: методические рекомендации: методические рекомендации / Федеральное гос. бюджетное учреждение «Российский науч. центр хирургии им. акад. Б.В. Петровского» Российской акад. мед. наук. М.: Медпрессинформ, 2015. 47 с.
  18. Резник Л.Б., Турушев М.А., Ерофеев С.А., Дзюба Г.Г. Локальная инъекционная терапия при повреждениях и заболеваниях опорно-д вигательной системы. М.: МЕДпресс-информ, 2016. 128 с.
  19. Майко О.Ю., Попова Л.В., Климова О.П., Леонтьева Н.П. Ультразвуковая диагностика синовита у больных гонартрозом // Вестник ОГУ. 2004. № 7. URL: https://cyberleninka.ru/ article/n/ultrazvukovaya-d iagnostika-sinovita-u-bolnyh-gonartroz om. Дата обращения: 20.11.2021.
  20. Приказ Минздрава России от 12.11.2012 N 900н «Об утверждении Порядка оказания медицинской помощи взрослому населению по профилю «ревматология». Дата обращения 23.08.2020.
  21. Rui L., Lei S., Qi Q., MingWei L., Wei C., Qiang L., Xiang L., Jun Q., JiYing C. Detecting Periprosthetic Joint Infection by Using Mass Spectrometry // The Journal of Bone and Joint Surgery. 2021. V. 103. N 20. P. 1917-1926. doi: 10.2106/JBJS.20.01944.
  22. Lüdemann M., Sulastyanto S., Raab P., Schoen C., Rudert M. Periprosthetic joint infection: Comparison of automated multiplexPCR Unyvero i60 ITI cartridge system with bacterial culture and real-time PCR // Technol Health Care. 2022. doi: 10.3233/ THC-213248. Epub ahead of print.
  23. Torres-S angiao E., Leal Rodriguez C., García Riestra C. Application and Perspectives of MALDI-TOF Mass Spectrometry in Clinical Microbiology Laboratories // Microorganisms. 2021. V. 9. N 7. 1539. doi: 10.3390/microorganisms9071539.

© Щендригин И.Н., Подсвирова И.А., 2022

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах