Оценка толщины роговицы ex vivo и in vivo при инстилляциях растворов фотосенсибилизатора в разных модификациях УФ кросслинкинга роговицы

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Цель. Выявить особенности действия и провести оценку эффективности растворов фотосенсибилизатора в эксперименте в разных модификациях стандартного кросслинкинга роговицы. Материалы и методы. Эксперименты выполнены на 32 энуклеированных глазах свиней ex vivo и на 12 кроликах (24 глаза) in vivo, разделенных на 4 группы в зависимости от вида инстиллируемого раствора фотосенсибилизатора: Декстралинк, Риболинк, Гиполинк и «Рибофлавин». Исследования насыщения роговицы производились двумя модификациями стандартного ультрафиолетового кросслинкинга роговицы: в первом случае инстилляции раствора фотосенсибилизатора выполняли в течение всей процедуры кросслинкинга (30 мин - насыщение и 30 мин - ультрафиолетовое облучение); во втором случае закапывания продолжались только в течение первых 30 мин, а в процессе ультрафиолетового облучения (30 мин) прекорнеальная пленка рибофлавина удалялась и инстилляции растворов не производились. Результаты и обсуждение. При инстилляциях растворов фотосенсибилизатора в течение 60 минут установлены следующие изменения: для Декстралинка характерно снижение толщины роговицы - на 24 % ex vivo и in vivo - на 21 %, Гиполинк, напротив, вызывал ее увеличение на 9 % и 23 % соответственно. Применение Риболинка и Рибофлавина практически не изменяло линейные параметры роговицы в течение всего срока наблюдения. Результаты 2-й серии исследований показали, что эффекты растворов, оказываемые на роговицу при их инстилляциях 30 минут, в целом сохранялись в течение всего срока наблюдения до 60 минут. В группе, где использовали растворы Декстралинк и Гиполинк, выявлена незначительная тенденция к восстановлению исходных параметров роговицы. Выводы. Безопасное и эффективное выполнение стандартного кросслинкинга роговицы возможно на основе рационального подхода к выполнению этапов насыщения стромы растворами фотосенсибилизатора в зависимости от исходного состояния роговицы: средство Декстралинк рекомендовано при толщине более 450 мкм, Риболинк - 400-450 мкм, Гиполинк - от 350 до 400 мкм. Прекращение инстилляций растворов на насыщенную рибофлавином роговицу в период ультрафиолетового облучения целесообразно проводить под интраоперационным контролем ее толщины. При выполнении стандартной техники кросслинкинга, где этап УФ облучения роговицы сопровождается инстилляциями раствора фотосенсибилизатора, необходимо учитывать наличие прекорнеальной пленки, способной поглощать часть энергии излучения в слоях стромы. Особенность данной техники кросслинкинга можно рассматривать в качестве потенциального способа защиты интраокулярных тканей от избыточного воздействия ультрафиолетового излучения, в частности при сшивании тонких роговиц.

Об авторах

М. М. Бикбов

Уфимский НИИ глазных болезней

Автор, ответственный за переписку.
Email: gyulli.kazakbaeva@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-0569-1264
г. Уфа, Российская Федерация

А. Р. Халимов

Уфимский НИИ глазных болезней

Email: gyulli.kazakbaeva@gmail.com
г. Уфа, Российская Федерация

В. К. Суркова

Уфимский НИИ глазных болезней

Email: gyulli.kazakbaeva@gmail.com
ORCID iD: 0000-0003-4964-263X
г. Уфа, Российская Федерация

Г. М. Казакбаева

Уфимский НИИ глазных болезней

Email: gyulli.kazakbaeva@gmail.com
ORCID iD: 0000-0002-0569-1264
г. Уфа, Российская Федерация

Список литературы

  1. Wollensak G., Spoerl E., Wilsch M. Keratocyte Apoptosis after Corneal Collagen Crosslinking Using Riboflavin UVA Treatment // Cornea. 2004. Vol. 23. P. 43-49. doi: 10.1097/00003226-200401000-00008.
  2. Arnal E., Peris-Martinez C., Menezo J.L. et al. Oxidative stress in keratoconus? // Investigative Ophthalmology and Visual Science. 2011. V. 52. N 12. P. 8592-8597. doi: 10.1167/iovs.11-7732
  3. Kohlhaas M., Spoerl E., Schilde T. et al. Biomechanical evidence of the distribution of cross-links in corneas treated with riboflavin and ultraviolet A light // J. Cataract. Refract. Surg. 2006. V. 32. P. 279-283. doi: 10.1016/j.jcrs.2005.12.092
  4. Халимов А.Р. Прекорнеальная пленка рибофлавина в системе ультрафиолетового кросслинкинга роговицы. Ex vivo исследование. Медицинский вестник Башкортостана. 2017. Т. 12. № 1. С. 65-67.
  5. Халимов А.Р. Молекулярные и клеточные механизмы ультрафиолетового сшивания роговицы: дис.. д-ра биол. наук. Уфа. 2019. 275 c.
  6. Бикбов М.М. Халимов А.Р., Бикбова Г.М. Офтальмологическое средство для кросслинкинга. Патент РФ изобретение № 2412707/ https://findpatent.ru/patent/241/2412707.html. 27.02.2011. Дата обращения: 21.10.2009.
  7. Бикбов М.М., Халимов А.Р., Бикбова Г.М. и др. Офтальмологическое средство для ультрафиолетового кросслинкинга роговицы (Риболинк). Патент РФ изобретение № 2646452 / 07.11.2016. https://findpatent.ru/patent/264/2646452.html. Дата обращения: 12.03.2012.
  8. Бикбов М.М., Халимов А.Р., Бикбова Г.М. и др. Гипоосмотическое офтальмологическое средство для ультрафиолетового кросслинкинга тонких роговиц Патент РФ на изобретение № 2631604 от 07.11.2016. https://findpatent.ru/patent/263/2631604. Дата обращения: 12.03.2012.
  9. Kymionis G.D., Kymionis M.A., Grentzelos Plaka A.D. Correlation of the Corneal Collagen Cross-Linking Demarcation Line Using Confocal Microscopy and Anterior Segment Optical Coherence Tomography in Keratoconic Patients // Am. J. Ophthalmol. 2014. Vol. 157. N 1. P. 110-115. doi: 10.1016/j.ajo.2013.09.010
  10. Халимов А.Р., Шевчук Н.Е., Суркова В.К. Декстран и его значение в офтальмологическом растворе рибофлавина для ультрафиолетового кросслинкинга роговичного коллагена // Сб. научн. труд. 2019. Т. 1. С. 201-205.
  11. Бикбов М.М., Шевчук Н.Е., Халимов А.Р. Динамика уровня рибофлавина во влаге передней камеры глаза экспериментальных животных при стандартном насыщении стромы растворами для УФ кросслинкинга роговицы // Вестник офтальмологии. 2016. Т. 132. N 6. С. 29-35.
  12. Бикбов М.М., Бикбова Г.М. Эктазии роговицы (патогенез, патоморфология, клиника, диагностика, лечение). М.: «Офтальмология», 2011. 164 с.
  13. Bueno J.M., Gualda E.J., Giakoumaki A. et al. Multiphoton microscopy of ex vivo corneas after collagen cross-linking // Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2011. V. 52. N 8. P. 5325-5331. doi:10.1167/ iovs.11-7184
  14. Kling S., Remon L., Perez-Escudero A., et al. Corneal biomechanical changes after collagen cross-linking from porcine eye inflation experiments. Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 2010. V. 51. N 8. P. 3961-3968. doi: 10.1167/iovs.09-4536
  15. Mencucci R., Marini M., Paladini I. Effects of riboflavin / UVA corneal cross–linking on keratocytes and collagen fibres in human cornea // Clin. Exp. Ophthalmol. 2010. Vol. 38. N 1. P. 49-56. doi: 10.1111/j.1442-9071.2010.02207.x

© Бикбов М.М., Халимов А.Р., Суркова В.К., Казакбаева Г.М., 2021

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах