Морфофункциональные особенности почки после введения аскорбиновой кислоты в модели острой лучевой нефропатии
- Авторы: Корякин С.Н.1, Петрушин К.С.2, Паршенков М.А.2, Урусханова Ж.Э.3, Щиткова А.А.3, Печникова Е.Ф.2, Демяшкин Г.А.1,3
-
Учреждения:
- Национальный медицинский исследовательский центр радиологии
- Первый Московский государственный университет им. И.М. Сеченова
- Российский университет дружбы народов
- Выпуск: Том 28, № 3 (2024): ФИЗИОЛОГИЯ. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ФИЗИОЛОГИЯ
- Страницы: 301-310
- Раздел: ФИЗИОЛОГИЯ. ЭКСПЕРИМЕНТАЛЬНАЯ ФИЗИОЛОГИЯ
- URL: https://journals.rudn.ru/medicine/article/view/37358
- DOI: https://doi.org/10.22363/2313-0245-2024-28-3-37358
- EDN: https://elibrary.ru/FYOJXA
Цитировать
Полный текст
Аннотация
Актуальность. Использование лучевой терапии при лечении злокачественных новообразований (ЗНО) актуализирует изучение способов защиты здоровых тканей от радиационного повреждения. Ввиду малого количества исследований, направленных на изучение структурно-функциональных изменений почек, как при их непосредственном облучении электронами, так и при радиотерапии ЗНО соседних органов необходимо проведение комплексного исследования. Одним из перспективных направлений лечения радиационной нефропатии является использование препаратов-антиоксидантов, в частности аскорбиновой кислоты. Цель: морфофункциональная оценка почки после локального облучения электронами и введения аскорбиновой кислоты. Материалы и методы. Крысы Wistar (n=90) были разделены на группы: I – контрольная (n=15); II – облучение, РОД 2 Гр (n=15); III – облучение, РОД 8 Гр (n=15); IV – облучение, РОД 2 Гр + аскорбиновая кислота (интраперитонеальная инъекция; доза 50 мг/кг) (n=15); V – облучение, РОД 8 Гр + аскорбиновая кислота (интраперитонеальная инъекция; доза 50 мг/кг) (n=15); VI – аскорбиновая кислота (интраперитонеальная инъекция; доза 50 мг/кг) (n=15). Микропрепараты почек окрашивали гематоксилином и эозином. Кроме того, проводили биохимическое исследование крови на уровень креатинина, азота мочевины, С-реактивного белка, рассчитывали отношение цистатина С к креатинину, а также гомогената почки на уровень концентрации малонового диальдегида (MDA), супероксиддисмутазы (SOD), а также глутатиона (GSH). Результаты и обсуждение. Исследование показало, что предлучевое введение аскорбиновой кислоты (интраперитонеальная инъекция; доза 50 мг/кг) в модели острой лучевой нефропатии, индуцированной локальным облучением электронами в РОД 2 Гр и РОД 8 Гр, способствовало выраженному снижению патоморфологических и биохимических изменений. Выводы. Локальное облучение электронами в РОД 2 Гр и РОД 8 Гр приводит к развитию радиационной нефропатии. В то же время предлучевое введение аскорбиновой кислоты снижает силу радиационно-индуцированного повреждения почек, а также усиливает эффективность антиоксидантной защиты.
Об авторах
Сергей Николаевич Корякин
Национальный медицинский исследовательский центр радиологии
Email: ek-koryakina@mrrc.obninsk.ru
ORCID iD: 0000-0003-0128-4538
Кирилл Сергеевич Петрушин
Первый Московский государственный университет им. И.М. Сеченова
Email: 89208537621@mail.ru
ORCID iD: 0009-0002-1074-6044
Михаил Алексеевич Паршенков
Первый Московский государственный университет им. И.М. Сеченова
Email: misjakj@gmail.com
ORCID iD: 0009-0004-7170-8783
Жанна Эйсаевна Урусханова
Российский университет дружбы народов
Email: jey.149@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0009-2291-3680
Анастасия Александровна Щиткова
Российский университет дружбы народов
Email: Nastmamontova@yandex.ru
ORCID iD: 0009-0000-0827-6771
Елизавета Федоровна Печникова
Первый Московский государственный университет им. И.М. Сеченова
Email: mponomoreva@gmail.com
ORCID iD: 0009-0008-6079-4187
Григорий Александрович Демяшкин
Национальный медицинский исследовательский центр радиологии; Российский университет дружбы народов
Автор, ответственный за переписку.
Email: dr.dga@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-8447-2600
Список литературы
- Wild CP, Espina C, Bauld L, Bonanni B, Brenner H, Brown K, Dillner J, Forman D, Kampman E, Nilbert M, Steindorf K, Storm H, Vineis P, Baumann M, Schüz J. Cancer Prevention Europe. Molecular Oncology. 2019;13(3):528–534. doi: 10.1002/1878-0261.12455
- Wei J, Wang B, Wang H, Meng L, Zhao Q, Li X. Radiation-induced normal tissue damage: oxidative stress and epigenetic mechanisms. Oxidative Medicine Cellular Longevity. 2019:3010342. doi: 10.1155/2019/3010342
- Held KD, Kawamura H, Kaminuma T, Paz AE, Yoshida Y, Liu Q, Willers H, Takahashi A. Effects of Charged Particles on Human Tumor Cells. Frontiers in Oncology. 2016;12:23. doi: 10.3389/fonc.2016.00023
- Wallace MA. Anatomy and physiology of the kidney. AORN Journal. 1998;68(5):800, 803–16, 819–20; quiz 821–4. doi: 10.1016/s0001-2092(06)62377-6
- Webster AC, Nagler EV, Morton RL, Masson P. Chronic Kidney Disease. The Lancet. 2017;389(10075):1238–1252. doi: 10.1016/S0140-6736(16)32064-5
- Wyld M, Morton RL, Hayen A, Howard K, Webster AC. A systematic review and meta-analysis of utility-based quality of life in chronic kidney disease treatments. PLOS Medicine. 2012;9(9): e1001307. doi: 10.1371/journal.pmed.1001307
- Klaus R, Niyazi M., Lange-Sperandio B. Radiation-induced kidney toxicity: molecular and cellular pathogenesis. Radiation Oncology. 2021;16:43. https://doi.org/10.1186/s13014–021–01764‑y
- Buchberger B, Scholl K, Krabbe L, Spiller L, Lux B. Radiation exposure by medical X-ray applications. German Medical Science. 2022;31:06. doi: 10.3205/000308
- Cervelli T, Panetta D, Navarra T. A New Natural Antioxidant Mixture Protects against Oxidative and DNA Damage in Endothelial Cell Exposed to Low-Dose Irradiation. Oxidative Medicine Cellular Longevity. 2017;9085947. doi: 10.1155/2017/9085947
- Campesi I, Brunetti A, Capobianco G, Galistu A, Montella A, Ieri F, Franconi F. Sex Differences in X-ray-Induced Endothelial Damage: Effect of Taurine and N-Acetylcysteine. Antioxidants (Basel). 2022;12(1):77. doi: 10.3390/antiox12010077
- Kawashima S, Funakoshi T, Sato Y. Protective effect of pre- and post-vitamin C treatments on UVB-irradiation-induced skin damage. Scientific Reports. 2018;8:16199. https://doi.org/10.1038/s41598–018–34530–4
- Popov KA, Bykov IM, Tsymbalyuk IY. State of the antioxidant protection system of rat liver in ischemia and reperfusion. RUDN Journal of Medicine. 2020;24(1):93–104. doi: 10.22363/2313-0245-2020-24-1-93-104
- Buglione M, Spiazzi L, Urpis M, Baushi L, Avitabile R, Pasinetti N, Borghetti P, Triggiani L, Pedretti S, Saiani F, Fiume A, Greco D, Ciccarelli S, Polonini A, Moretti R, Magrini SM. Light and shadows of a new technique: is photon total-skin irradiation using helical IMRT feasible, less complex and as toxic as the electrons one? Radiation Oncology. 2018;13(1):158. doi: 10.1186/s13014-018-1100-4
- Lee MJ, Son HJ. Electron beam radiotherapy for Kaposi’s sarcoma of the toe and web. Journal of Cancer Research and Therapeutics. 2020;16(1):161–163. doi: 10.4103/jcrt.JCRT_115_18
- Zanoni M, Cortesi M, Zamagni A, Tesei A. The Role of Mesenchymal Stem Cells in Radiation-Induced Lung Fibrosis. International Journal of Molecular Sciences. 2019;20(16):3876. doi: 10.3390/ijms20163876
- Straub JM, New J, Hamilton CD, Lominska C, Shnayder Y, Thomas SM. Radiation-induced fibrosis: mechanisms and implications for therapy. Journal of Cancer Research and Clinical Oncology. 2015;141(11):1985–1994. doi: 10.1007/s00432-015-1974-6
- Wegner RE, Abel S, Vemana G, Mao S, Fuhrer R. Utilization of Stereotactic Ablative Body Radiation Therapy for Intact Renal Cell Carcinoma: Trends in Treatment and Predictors of Outcome. Advances in Radiation Oncology. 2020;5(1):85–91. https://doi.org/10.1016/j.adro.2019.07.018
- Abozaid O AR, Moawed FSM, Farrag MA, Abdel Aziz AAA. 4-(4-Hydroxy‑3‑methoxyphenyl)-2‑butanone modulates redox signal in gamma-irradiation-induced nephrotoxicity in rats. Free Radical Research. 2017;51(11–12):943–953. doi.org/10.1080/10715762.2017.1395025
- Ivanov SV, Ostrovskaya RU, Sorokina AV, Seredenin SB. Analysis of Cytoprotective Properties of Afobazole in Streptozotocin Model of Diabetes. Bulletin of Experimental Biology and Medicine. 2020;169(6):783–786. doi: 10.1007/s10517-020-04978-4
- Ozbek E. Induction of oxidative stress in kidney. International Journal of Nephrology. 2012;2012:465897. doi: 10.1155/2012/465897
- Ognjanović BI, Djordjević NZ, Matić MM, Obradović JM, Mladenović JM, Štajn AŠ, Saičić ZS. Lipid peroxidative damage on Cisplatin exposure and alterations in antioxidant defense system in rat kidneys: a possible protective effect of selenium. International Journal of Molecular Sciences. 2012;13(2):1790–1803. doi: 10.3390/ijms13021790