Особенности иммунной реактивности в динамике послеожогового периода

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Актуальность. На сегодняшний день сложным видом повреждения тканей кожи остается ожоговая травма. Наряду с локальными деструктивными и дистрофическими явлениями наблюдаются системные изменения в организме. Цель исследования - экспериментальное изучение иммунной реактивности организма нелинейных крыс в условиях «ожогового» стресса, сформированного в результате контактной термической травмы. Материалы и методы. Исследование проводили на нелинейных крысах-с амцах средней массы 220 гр. Функциональную активность иммунной системы лабораторных животных оценивали на основании стандартных тестов оценки адаптивности иммунной системы. Результаты и обсуждение . В ходе экспериментального исследования установлено, что в динамике ожоговой травмы у лабораторных животных наблюдались вариабельные изменения иммунной реактивности организма на уровне клеточного и гуморального звеньев иммунитета, что проявлялось снижением индекса РГЗТ и увеличением следующих показателей - титра антител, фагоцитарного индекса, фагоцитарного числа, лейкоцитарного коэффициента и количества лейкоцитов. Повышенное содержание палочкоядерных форм указывало на активацию гранулоцитопоэза, что определяло дерегенеративный ядерный сдвиг нейтрофильных гранулоцитов влево. Наряду с указанными изменениями наблюдали снижение массы иммунных органов (тимуса и селезенки), что можно объяснить выражением акцидентальной инволюции, вызываемой интоксикацией на фоне термического ожога. Выводы. В условиях «ожогового» стресса происходит иммунный дисбаланс в виде активации одних и супрессии других звеньев в разные сроки наблюдений. Таким образом, в ходе ожогового процесса происходящие на уровне организма системные иммунные изменения имеют разнонаправленный динамический характер, что свидетельствует об адаптивных возможностях иммунной системы.

Об авторах

А. К. Ажикова

Астраханский государственный медицинский университет

Email: alfiaimacheva@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-9758-1638
Астрахань, Российская Федерация

А. Л. Ясенявская

Астраханский государственный медицинский университет

Email: alfiaimacheva@mail.ru
ORCID iD: 0000-0003-2998-2864
Астрахань, Российская Федерация

М. А. Самотруева

Астраханский государственный медицинский университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: alfiaimacheva@mail.ru
ORCID iD: 0000-0001-5336-4455
Астрахань, Российская Федерация

Список литературы

  1. Махнева Н.В. Клеточные и гуморальные компоненты иммунной системы кожи // Российский журнал кожных и венерических болезней. 2016. Т. 19. № 1. С. 12-17.
  2. Belokhvostova D., Berzanskyte I., Cujba A.M., Jowett G., Marshall L., Prueller J., Watt F.M. Homeostasis, regeneration and tumour formation in the mammalian epidermis // Int J. Dev Biol. 2018. V. 62. № 6-7-8. P. 571-582.
  3. Voisin T., Bouvier A., Chiu I.M. Neuro-immune interactions in allergic diseases: novel targets for therapeutics // Int Immunol. 2017. V. 29. № 6. P. 247-261. doi: https://doi: 10.1093/intimm/dxx040
  4. Хаитов Р.М. Иммунология: структура и функции иммунной системы: учебное пособие. 2-е изд. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2019. 328 с.
  5. Cамотруева М.А., Ясенявская А.Л., Цибизова А.А., Башкина О.А., Галимзянов Х.М. Нейроиммуноэндокринология: современные представления о молекулярных механизмах // Иммунология. 2017. T. 38. № 1. С. 49-59. doi: https://doi: 10.18821/0206-4952-2017-38-1-49-59
  6. Коньков С.В., Илюкевич Г.В., Золотухина Л.В. Оценка эффективности способа иммунокоррекции у пациентов с тяжелой термической травмой // Экстренная медицина. 2016. Т. 5. № 1. С. 72-79.
  7. Корнева Е.А., Шанин С.Н., Новикова Н.С., Пугач В.А. Клеточно-м олекулярные основы нейроиммунного взаимодействия при стрессе // Российский физиологический журнал им. И.М. Сеченова. 2017. Т. 103. № 3. С. 217-229.
  8. Моррисон В.В., Божедомов А.Ю., Симонян М.А., Моррисон А.В. Системный воспалительный ответ и цитокиновый профиль в динамике развития ожоговой болезни // Саратовский научно-м едицинский журнал. 2017. Т. 13. № 2. С. 229-232.
  9. VeigaFernandes H., Mucida D. NeuroImmune Interactions at Barrier Surfaces // Cell. 2016. V. 165. № 4. Р. 801811. https:// doi: 10.1016/j.cell.2016.04.041
  10. Vinaik R., Abdullahi A., Barayan D., Jeschke MG. NLRP3 inflammasome activity is required for wound healing after burns // Transl Res. 2020. V. 217. Р. 4760. 10.1016/j.trsl.2019.11.002' target='_blank'>https://doi: 10.1016/j.trsl.2019.11.002
  11. Abo El-N oor M.M., Elgazzar F.M., Alshenawy H.A. Role of inducible nitric oxide synthase and interleukin-6 expression in estimation of skin burn age and vitality // J Forensic Leg Med. 2017. V. 52. Р. 148-153. 10.1016/j.jflm.2017.09.001' target='_blank'>https://doi: 10.1016/j.jflm.2017.09.001.
  12. Oka T., Ohta K., Kanazawa T., Nakamura K. Interaction between Macrophages and Fibroblasts during Wound Healing of Burn Injuries in Rats // Kurume Med J. 2016. V. 62. № 3-4. P. 59-66. 10.2739/kurumemedj.MS00003' target='_blank'>https://doi: 10.2739/kurumemedj.MS00003
  13. Farinas A.F., Bamba R., Pollins A.C., Cardwell N.L., Nanney L.B., Thayer W.P. Burn wounds in the young versus the aged patient display differential immunological responses // Burns. 2018. V. 44. № 6. P. 1475-1481. 10.1016/j.burns.2018.05.012' target='_blank'>https://doi: 10.1016/j.burns.2018.05.012
  14. El Khatib A., Jeschke M.G. Contemporary Aspects of Burn Care // Medicina (Kaunas). 2021. V. 16. № 57(4). P. 386. doi: 10.3390/ medicina57040386
  15. George B., Suchithra T.V., Bhatia N. Burn injury induces elevated inflammatory traffic: the role of NF-κB // Inflamm Res. 2021. V. 70. № 1. P. 51-65. doi: 10.1007/s00011-020-01426-x
  16. Moins-T eisserenc H., Cordeiro D.J., Audigier V., Ressaire Q, Benyamina M, Lambert J, Maki G, Homyrda L, Toubert A, Legrand M. Severe Altered Immune Status After Burn Injury Is Associated With Bacterial Infection and Septic Shock // Front Immunol. 2021. V. 12. P. 586195. doi: 10.3389/fimmu.2021.586195
  17. Burns B., Jackson K., Farinas A., Pollins A., Bellan L., Perdikis G., Kassis S., Thayer W. Eosinophil infiltration of burn wounds in young and older burn patients // Burns. 2020. V. 46. № 5. P. 1136-1141. doi: 10.1016/j.burns.2019.11.022
  18. Jackson K.R., Pollins A.C., Assi P.E., Kassis SK, Cardwell N.L., Thayer W.P. Eosinophilic recruitment in thermally injured older animals is associated with worse outcomes and higher conversion to full thickness burn // Burns. 2020. V. 46. № 5. P. 1114-1119. doi: 10.1016/j.burns.2019.10.018
  19. Jeschke M.G., van Baar M.E., Choudhry M.A., Chung K.K., Gibran N.S., Logsetty S. Burn injury // Nat Rev Dis Primers. 2020. V. 6. № 1. P. 11. doi: 10.1038/s41572-020-0145-5.
  20. Willis M.L., Mahung C., Wallet S.M., Barnett A., Cairns B.A., Coleman L.G. Jr., Maile R. Plasma extracellular vesicles released after severe burn injury modulate macrophage phenotype and function // J Leukoc Biol. 2022. V. 111. № 1. P. 33-49. doi: 10.1002/JLB.3MIA0321-150RR

© Ажикова А.К., Ясенявская А.Л., Самотруева М.А., 2022

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах