Выбор оптимального маркера острого повреждения печени крыс в эксперименте

Обложка

Цитировать

Полный текст

Аннотация

Актуальность. Оценка повреждения и функционального состояния печени является одной из ведущих задач клинико-лабораторной диагностики. Традиционно используемые методы определения в крови активности ряда индикаторных ферментов, обладающих относительной органоспецифичностью, таких как аспартатаминотрансфераза, аланинаминотрансфераза, лактатдегидрогеназа, сорбитолдегидрогеназа, щелочная фосфатаза и γ-глутамилтрансфераза обладают низкой их специфичностью по отношению к заболеваниям печени. В связи с этим определение оптимального маркера острого повреждения печени является актуальной проблемой. Цель: определение динамики изменений маркеров повреждения печени у крыс на разных сроках реперфузии после 20-ти минутной ишемии для выбора показателей, наиболее информативно характеризующих состояние животных в условиях проведения коррекции ишемически-реперфузионного синдрома. Материалы и методы: исследование проведено на 120 белых нелинейных крысах-самцах массой 200–250 грамм. Животные были разделены на 8 групп по 15 особей, всем животным выполнялось моделирование ишемии печени путем пережатия аналога печеночно-двенадцатиперстной связки сосудистым зажимом на 20 минут. Затем у разных групп крыс производили забор крови в разные сроки реперфузии – 5, 15, 30, 60, 120, 180 минут, 8 часов и сутки. В плазме крови лабораторных животных определяли активность аланинаминотрансферазы (АЛТ), аспартатаминотрансферазы (АСТ), лактатдегидрогеназы (ЛДГ), глутатионтрансферазы (ГSТ) и концентрацию лактата. Результаты: полученные результаты позволили охарактеризовать два основных пика показателей: 5-минутный период после восстановления кровотока – максимум активности глутатионтрансферазы и концентрации лактата, увеличенных в 3,9–4,7 раза; 60–180 минут реперфузии – пик активности аминотрансфераз, значительный рост активности которых начинается с 60-ти минут после восстановления кровотока и достигает максимума к 3-му часу реперфузии, и ЛДГ, пик активности которой регистрируется уже к 60-й минуте реваскуляризации. При этом через 8 часов реперфузии определена очевидная тенденция снижения всех изученных показателей, которая заканчивается спустя сутки после моделирования ишемии снижением до уровня контрольных значений. Заключение: оценка повреждения органа в ишемическом периоде и противоишемического действия метаболических препаратов может проводиться с определением нарастания концентрации лактата и активности глутатионтрансферазы практически сразу после восстановления кровотока. Развитие повреждений в реперфузионный период более целесообразно оценивать путем определения АСТ, АЛТ и ЛДГ после 3-часового периода восстановления кровотока, в это время регистрируются максимальные значения маркеров при условии 20-минутной тотальной ишемии печени.

Об авторах

К. А. Попов

Кубанский государственный медицинский университет

Автор, ответственный за переписку.
Email: naftalin444@mail.ru
SPIN-код: 9456-9710
Краснодар, Российская Федерация

И. Ю. Цымбалюк

Кубанский государственный медицинский университет

Email: naftalin444@mail.ru
SPIN-код: 4493-0738
Краснодар, Российская Федерация

Р. И. Сепиашвили

Российский университет дружбы народов

Email: naftalin444@mail.ru
SPIN-код: 6921-7356
Москва, Российская Федерация

И. М. Быков

Кубанский государственный медицинский университет

Email: naftalin444@mail.ru
SPIN-код: 9977-6613
Краснодар, Российская Федерация

Е. С. Устинова

Кубанский государственный медицинский университет

Email: naftalin444@mail.ru
Краснодар, Российская Федерация

М. И. Быков

Кубанский государственный медицинский университет

Email: naftalin444@mail.ru
SPIN-код: 2909-3520
Краснодар, Российская Федерация

Список литературы

  1. Волощук О.Н., Копыльчук Г.П. Активность сорбитолдегидрогеназы сыворотки как чувствительный маркер повреждения печени // Лабораторная диагностика. Восточная Европа. 2015. № 2 (14). С. 94-99.
  2. Цымбалюк И.Ю., Мануйлов А.М., Попов К.А., Басов А.А. Метаболическая коррекция дихлорацетатом натрия ишемически-реперфузионного повреждения при сосудистой изоляции печени в эксперименте // Новости хирургии. 2017. 25 (5). С. 447-453. doi: 10.18484/2305-0047.2017.5.447.
  3. Saidi R.F., Kenari S.K. Liver ischemia/reperfusion injury: an overview // J. Invest. Surg. 2014. V. 27 (6). P. 366-379. doi: 10.3109/08941939.2014.932473.
  4. Liang J., Zhou Y., Wang Z., Chen H. Relationship between liver damage and serum levels of IL-18, TNF-alpha and NO in patients with acute pancreatitis // Nan Fang Yi Ke Da Xue Xue Bao. 2010. V. 30 (8). P. 1912-1914.
  5. Basov A.A., Elkina А.A., Samkov A.A., Volchenko N.N., Baryshev M.G., Dzhimak S.S., et al. Influence of deuteriumdepleted water on the isotope D/H composition of liver tissue and morphological development of rats at different periods of ontogenesis // Iranian Biomedical Journal. 2019. V. 23. № 2. P. 129-141.
  6. Johansen M.J., Gade J., Stender S., Frithioff-Bøjsøe C., Lund M. AV., Chabanova E., et al. The effect of overweight and obesity on liver biochemical markers in children and adolescents // J. Clin. Endocrinol. Metab. 2020. V. 105 (2). dgz010. doi:10.1210/ clinem/dgz010.
  7. Дзидзава И.И., Слободяник А.В., Кудрявцева А.В., Железняк И.С., Котив Б.Н., Алентьев С.А., и др. Применение КТ-волюметрии и клиренс-теста с индоцианином зеленым для определения показаний к предоперационной эмболизации воротной вены // Анналы хирургической гепатологии. 2016. Т. 21 (3). С. 34-46.
  8. Halle B.M., Poulsen T.D., Pedersen H.P. Indocyanine green plasma disappearance rate as dynamic liver function test in critically ill patients // Acta Anaesthesiol. Scand. 2014. V. 58 (10). P. 1214-1219. doi: 10.1111/aas.12406.
  9. Sakka S.G. Assessment of liver perfusion and function by indocyanine green in the perioperative setting and in critically ill patients // J. Clin. Monit. Comput. 2018. V. 32 (5). P. 787-796. doi: 10.1007/s10877-017-0073-4.
  10. Dzhimak S.S., Basov A.A., Volchenko N.N., Samkov A.A., Baryshev M.G., Fedulova L.V. Changes in the functional activity of mitochondria isolated from the liver of rat that passed the preadaptation to ultra-low deuterium concentration // Doklady Biochemistry and Biophysics. 2017. V. 476. № 1. P. 323-325.
  11. Ge Y., Zhang Q., Jiao Z., Li H., Bai G., Wang H. Adipose-derived stem cells reduce liver oxidative stress and autophagy induced by ischemia-reperfusion and hepatectomy injury in swine // Life Sci. 2018. V. 214. P. 62-69. doi: 10.1016/j.lfs.2018.10.054.
  12. Карпищенко А.И. Медицинские лабораторные технологии. Справочник. СПб: Интермедика, 2002. 600 с.

© Попов К.А., Цымбалюк И.Ю., Сепиашвили Р.И., Быков И.М., Устинова Е.С., Быков М.И., 2020

Creative Commons License
Эта статья доступна по лицензии Creative Commons Attribution 4.0 International License.

Данный сайт использует cookie-файлы

Продолжая использовать наш сайт, вы даете согласие на обработку файлов cookie, которые обеспечивают правильную работу сайта.

О куки-файлах